Растительное сырье как потенциальный источник противоопухолевых агентов

Я.Н. Камалова¹, Н.С. Карамова¹, П.В. Зеленихин¹, И. Абдул-Хафиз², О.Н. Ильинская¹

¹Казанский (Приволжский) федеральный университет, г. Казань, 420008, Россия

²Асьютский университет, г. Асьют, 71515, Египет

Полный текст PDF

DOI: 10.26907/2542-064X.2019.3.385-394 

Для цитирования: Камалова Я.Н., Карамова Н.С., Зеленихин П.В., Абдул-Хафиз И., Ильинская О.Н. Растительное сырье как потенциальный источник противоопухолевых агентов // Учен. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. – 2019. – Т. 161, кн. 3. – С. 385–394. – doi: 10.26907/2542-064X.2019.3.385-394.

For citation: Kamalova Ya.N., Karamova N.S., Zelenikhin P.V., Abdul-Hafeez E.Y., Ilinskaya O.N. Plant materials as a potential source of antitumor agents. Uchenye Zapiski Kazanskogo Universiteta. Seriya Estestvennye Nauki, 2019, vol. 161, no. 3, pp. 385–394. doi: 10.26907/2542-064X.2019.3.385-394. (In Russian)

Аннотация

Фитоэкстракты являются перспективным природным ресурсом для создания эффективных и безопасных противоопухолевых препаратов. В настоящей работе установлены концентрации полумаксимального ингибирования (IC₅₀) для экстрактов некоторых лекарственных растений семейства Agavaceae (Asparagaceae) по отношению к культуре клеток аденокарциномы легких человека А549. Показано, что водные растворы вытяжек листьев и корневищ Sansevieria cylindrica в максимальной исследованной концентрации снижают выживаемость опухолевых клеток в два раза. Наиболее эффективным был экстракт листьев Polianthes tuberosa, у которого IC₅₀, соответствующая дозе, вызывающей потерю жизнеспособности 50% клеток А549, составила 62.5 мкг/мл. Сравнительно меньшую активность проявили экстракты листьев Furcraea gigantea (IC50 82 мкг/мл) и экстракт клубней P. tuberosa (IC50 96.3 мкг/мл). Таким образом, экстракты листьев F. gigantea и P. tuberosa являются потенциальными источниками активных метаболитов, способных ингибировать рост опухолевых клеток.

Ключевые слова: растительные экстракты, цитотоксичность, рак, Agavaceae (Asparagaceae)

Благодарности. Работа выполнена за счет средств субсидии, выделенной в рамках государственной поддержки Казанского (Приволжского) федерального университета в целях повышения его конкурентоспособности среди ведущих мировых научно-образовательных центров, и при поддержке РФФИ (проект № 15-54-61024).

Литература

1. Воробьев В.А., Лодова О.С. Диверсификация производства и развитие сельской местности // Вестник Белорус. гос. с.-х. акад. – 2005. – №. 2. – С. 8–10.

2. Dias D.A., Urban S., Roessner U. A historical overview of natural products in drug discovery // Metabolites. – 2012. – V. 2, No 2. – P. 303–336. – doi: 10.3390/metabo2020303.

3. Van Wyka A.S., Prinsloo G. Medicinal plant harvesting, sustainability and cultivation in South Africa // Biol. Conserv. – 2018. – V. 227. – P. 335–342. – doi: 10.1016/j.biocon.2018.09.018.

4. El-Demerdash M. Medicinal plants of Egypt // Saxena P. (Ed.). Development of Plant-Based Medicines: Conservation, Efficacy and Safety. – Springer, 2001. – Ch. 4, P. 69–93.

5. Unnati Sh., Ripal Sh., Sanjeev A., Niyati A. Novel anticancer agents from plant sources // Chin. J. Nat. Med. – 2013. – V. 11, No. 1. – P. 16−23. − doi: 10.1016/S1875-5364(13)60002-3.

6. Камалова Я.Н., Карамова Н.С., Ильинская О.Н. Препараты растительного происхождения в противоопухолевой терапии (обзор) // Биофарм. журн. – 2018. – Т. 10, Вып. 3. – С. 3–19.

7. Azwanida N.N. A review on the extraction methods use in medicinal plants, principle, strength and limitation // Med. Aromat. Plants. – 2015. – V. 4, No 3. – Art. 1000196, P. 1–6. – doi: 10.4172/2167-0412.1000196.

8. Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assays // J. Immunol. Methods. – 1983. – V. 65, No 1–2. – P. 55–63. – doi: 10.1016/0022-1759(83)90303-4.

9. Aslam M.Sh., Ahmad M.S. Worldwide importance of medicinal plants: Current and historical perspectives // Recent Adv. Biol. Biomed. – 2016. – V. 2. – P. 88–93.

10. Iqbal J., Abbasi B.A., Mahmood T. Plant-derived anticancer agents: A green anticancer approach // Asian Pac. J. Trop. Biomed. – 2017. – V. 7, No 12. – P. 1129–1150. – doi: 10.1016/j.apjtb.2017.10.016.

11. Buyel J.F. How plants can contribute to the supply of anticancer compounds // Malik S. (Ed.). Biotechnology and Production of Anti-Cancer Compounds. – Springer, 2017. – Ch. 2, P. 39–72.

12. Sáenz M.T., Garcia M. D., Quilez A., Ahumada M.C. Cytotoxic activity of Agave intermixta L. (Agavaceae) and Cissus sicyoides L. (Vitaceae) // Phytother. Res. – 2000. –V. 14, No 7. – P. 552–554. – doi: 10.1002/1099-1573(200011)14:7<552::AID-PTR639>3.0.CO;2-U.

13. Ohtsuki T., Koyano T., Kowithayakorn T., Sakai Sh., Kawahara N., Goda Yu., Yamaguchi N., Ishibashi M. New chlorogenin hexasaccharide isolated from Agave fourcroydes with cytotoxic and cell cycle inhibitory activities // Bioorg. Med. Chem. – 2004. – V. 12, No 14. – P. 3841–3845. – doi: 10.1016/j.bmc.2004.05.004.
14. Jin M., Zhang Y.J., Yang C.R. Spirostanol and furostanol glycosides from the fresh tubers of Polianthes tuberosa // J. Nat. Prod. – 2004. – V. 67, No 1. – P. 5–9. – doi: 10.1021/np034028a.

15. Raslan M.A., Melek F.R., Said A.A., Elshamy A.I., Umeyama A., Mounier M.M. New cytotoxic dihydrochalcone and steroidal saponins from the aerial parts of Sansevieria cylindrica Bojer ex Hook // Phytochem. Lett. – 2017. – V. 22. – P. 39–43. – doi: 10.1016/j.phytol.2017.08.004.

16. Amida M.B., Yemitan O.K., Adeyemi O.O. Toxicological assessment of the aqueous root extract of Sanseviera liberica Gerome and Labroy (Agavaceae) // J. Ethnopharmacol. – 2007. – V. 113, No 1. – P. 171–175. doi: 10.1016/j.jep.2007.03.033.

17. Камалова Я.Н., Штырёва В.В., Иссам Абдул-Хафиз, Омер Х.М. Ибрагим, Зеленихин П.В., Карамова Н.С., Ильинская О.Н. Цитотоксическое и апоптозиндуцирующее действие экстрактов растений семейства Аsparagaceae по отношению к клеткам аденокарциномы легких человека // Учен. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. – 2016. – Т. 158, кн. 3. – С. 338–350.

18. Ali M.S., Sharma G.C., Asplund R.O., Nevins M.P., Garb S. Isolation of antitumor polysaccharide fractions from Yucca glauca Nutt. (Lilliaceae) // Growth. – 1978. – V. 42, No 2. – P. 213–223.

19. Balestrieri C., Felice F., Piacente S., Pizza C., Montoro P, Oleszek W., Visciano V., Balestrieri M.L. Relative effects of phenolic constituents from Yucca schidigera Roezl. bark on Kaposi’s sarcoma cell proliferation, migration, and PAF synthesis // Biochem. Pharmacol. – 2006. – V. 71, No 10. – P. 1479–1487. – doi: 10.1016/j.bcp.2006.01.021.

20. Mimaki Y., Yokosuka A., Sashida Y. Steroidal glycosides from the aerial parts of Polianthes tuberosa // J. Nat. Prod. – 2000. – V. 63, No 11. – P. 1519–1523. – doi: 10.1021/np000230r.

21. Yokosuka A., Sano T., Hashimoto K., Sakagami H., Mimaki. Y. Steroidal glycosides from Furcraea foetida and their cytotoxic activity // Chem. Pharm. Bull. – 2009. – V. 57, No 10. – P. 1161–1166. – doi: 10.1248/cpb.57.1161.

    Поступила в редакцию

    22.01.19

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.