Казанский (Приволжский) федеральный университет

Применение клеточного иммуноферментного анализа для скрининга гибридом и получения перспективных продуцентов моноклональных антител

И.И. Степанова, К.А. Артемьева, А.А. Степанов, И.М. Богданова, М.Н. Болтовская, Е.А. Пономаренко

Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына

ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского», г. Москва, 119991, Россия

ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ

Полный текст PDF

DOI: 10.26907/2542-064X.2022.4.535-550

Для цитирования: Степанова И.И., Артемьева К.А., Степанов А.А., Богданова И.М., Болтовская М.Н., Пономаренко Е.А. Применение клеточного иммуноферментного анализа для скрининга гибридом и получения перспективных продуцентов моноклональных антител // Учен. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. – 2022. – Т. 164, кн. 4. – С. 535–550. – doi: 10.26907/2542-064X.2022.4.535-550.

For citation: Stepanova I.I., Artemyeva K.A., Stepanov A.A., Bogdanova I.M., Ponomarenko E.A., Boltovskaya M.N. Application of In-Cell ELISA assay for hybridoma screening and selection of promising producers of monoclonal antibodies. Uchenye Zapiski Kazanskogo Universiteta. Seriya Estestvennye Nauki, 2022, vol. 164, no. 4, pp. 535–550. doi: 10.26907/2542-064X.2022.4.535-550. (In Russian)

Аннотация

В статье рассмотрены особенности и преимущества использования иммуноферментного анализа для проведения скрининга гибридом и отбора моноклональных антител, перспективных для использования в иммуногистохимических исследованиях и идентификации клеток in vitro. Поэтапно охарактеризована методика клеточного иммуноферментного анализа, демонстрируются его преимущества перед известными методами анализа структурных и секреторных белков. Предварительное проведение клеточного иммуноферментного анализа целесообразно использовать для отбора клонов, продуцирующих моноклональные антитела с интересующей специфичностью, определения оптимальной концентрации первичных антител для последующей постановки иммуногистохимической реакции и идентификации культивируемых клеток.

Ключевые слова: In-Cell ELISA, гибридома, моноклональные антитела, иммуногистохимия

Литература

Taylor C.R., Burns J. The demonstration of plasma cells and other immunoglobulin-containing cells in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues using peroxidase-labelled antibody // J. Clin. Pathol. – 1974. – V. 27, No 1. – P. 14–20. – doi: 10.1136/jcp.27.1.14.
Boveia V., Schutz–Geschwender A. Quantitative analysis of signal transduction with in-cell western immunofluorescence assays // Kurien B., Scofield R. (Eds.) Detection of Blotted Proteins. Methods in Molecular Biology, V. 1314. – N. Y.: Humana Press, 2015. – P. 115–130. – doi: 10.1007/978-1-4939-2718-0_13.
Chen H., Kovar J., Sissons S., Cox K., Matter W., Chadwell F., Luan P., Vlahos C.J., Schutz-Geschwender A., Olive D.M. A cell–based immunocytochemical assay for monitoring kinase signaling pathways and drug efficacy // Anal. Biochem. – 2005. – V. 338, No 1. – P. 136–142. – doi: 10.1016/j.ab.2004.11.015.
Pandre M.K., Shaik Sh., Pratap V.V.V.S., Yadlapalli P., Yanamandra M., Mitra S. A novel in-cell ELISA method for screening of compounds inhibiting TRKA phosphorylation, using KM12 cell line harboring TRKA rearrangement //Anal. Biochem. – 2018. – V. 545. – P. 78–83. – doi: 10.1016/j.ab.2018.01.014.
Bishop G.A., Hwang J. Use of a cellular ELISA for the detection of cell surface antigens // Biotechniques. – 1992. – V. 12, No 3. – P. 326–330.
Moerke N.J., Hoffman G.R. Development of in-cell Western assays using far-red fluorophores // Curr. Protoc. Chem. Biol. – 2011. – V. 3, No 1. – P. 39–52. – doi: 10.1002/9780470559277.ch100153.
Renukaradhya J.G., Sriram V., Polakova K., Russ G., Brutkiewicz R.R. Development of a quantitative cell-based intracellular ELISA for the screening of B cell hybridoma supernatants: A novel rapid assay to detect positive clones // Hybrid Hybridomics. – 2004. – V. 23, No 6. – P. 373–379. – doi: 10.1089/hyb.2004.23.373.
Grunow R., D’Apuzzo M., Wyss-Coray T., Frutig K., Pichler W.J. A cell surface ELISA for the screening of monoclonal antibodies to antigens on viable cells in suspension // J. Immunol. Methods. – 1994. – V. 171, No 1. – P.93–102. – doi: 10.1016/0022-1759(94)90232-1.
Ogino T., Wang X., Ferrone S. Modified flow cytometry and cell-ELISA methodology to detect HLA class I antigen processing machinery components in cytoplasm and endoplasmic reticulum // J. Immunol. Methods. – 2003. – V. 278, No 1–2. – P. 33–44. – doi: 10.1016/s0022-1759(03)00224-2.
Kashyap R.S., Kainthla R.P., Satpute R.M., Agarwal N.P., Chandak N.H., Purohit H.J., Taori G.M., Daginawala H.F. Differential diagnosis of tuberculous meningitis from partially-treated pyogenic meningitis by cell ELISA // BMC Neurol. – 2004. – V. 4. – Art. 16, P. 1–6. – doi: 10.1186/1471-2377-4-16.
Shan Z., Yamasaki T., Suzuki A., Hasebe R., Horiuchi M. Establishment of a simple cell-based ELISA for the direct detection of abnormal isoform of prion protein from prion-infected cells without cell lysis and proteinase K treatment // Prion. – 2016. – V. 10, No 4. – P. 305–318. – doi: 10.1080/19336896.2016.1189053.
Fuhrmann S., Kirsch M., Wewetzer K., Hofmann H.-D. Use of cell ELISA for the screening of neurotrophic activities on minor cell populations in retinal monolayer cultures // J. Neurosci. Methods. – 1997. – V. 75, No 2. – P. 199–205. – doi: 10.1016/s0165-0270(97)00073-3.
Falahat R., Wiranowska M., Gallant N.D., Toomey R., Hill R., Alcantar N. A Cell ELISA for the quantification of MUC1 mucin (CD227) expressed by cancer cells of epithelial and neuroectodermal origin // Cell Immunol. – 2015. – V. 298, No 1–2. – P. 96–103. – doi: 10.1016/j.cellimm.2015.09.009.
Schöler L., Le-Trilling V.T.K., Eilbrecht M., Mennerich D., Anastasiou O.E., Krawczyk A., Herrmann A., Dittmer U., Trilling M. A novel In-Cell ELISA assay allows rapid and automated quantification of SARS-CoV-2 to analyze neutralizing antibodies and antiviral compounds // Front. Immunol. – 2020. – V. 11. – Art. 573526, P. 1–11. – doi: 10.3389/fimmu.2020.573526.
Filardo S., Di Pietro M., Pasqualetti P., Manera M., Diaco F., Sessa R. In-cell western assay as a high-throughput approach for Chlamydia trachomatis quantification and susceptibility testing to antimicrobials // PLoS ONE. – 2021. – V. 6, No 5. – Art. e0251075, P. 1–13. – doi: 10.1371/journal.pone.0251075.
Kohl T.O., Ascoli C.A. Direct and indirect cell-based enzyme–linked immunosorbent assay // Cold Spring Harbor. Protoc. – 2017. – V. 2017, No 5. – doi: 10.1101/pdb.prot093732.
Куделькина В.В., Халанский А.С., Макарова О.В., Цветков И.С., Косырева А.М., Алексеева А.И., Шелков А.Ю., Максименко О.О., Разживина В.А., Гельперина С.Э. Сравнительная морфологическая и биохимическая характеристика токсического действия доксорубицина и наносомальной формы PLGA-доксорубицина при лечении экспериментальной глиобластомы // Клиническая и экспериментальная морфология. – 2021. – Т. 10, № 1. – С. 58–65. – doi: 10.31088/CEM2021.10.1.58-65.
Crowther J.R. ELISA. Theory and practice // Methods Mol. Biol. – 1995. – V. 42. – P. 1–218. – doi: 10.1385/0–89603–279–5:1.
Lourenço E.V., Roque-Barreira M.-C. Immunoenzymatic quantitative analysis of antigens expressed on the cell surface (cell-ELISA) // Methods Mol. Biol. – 2010. – V. 588. – P. 301–309. – doi: 10.1007/978-1-59745-324-0-29.
Wang X., Campoli M., Cho H.S., Ogino T., Bandoh N., Shen J., Hur S.Y., Kageshita T., Ferrone S. A method to generate antigen-specific mAb capable of staining formalin-fixed, paraffin-embedded tissue sections // J. Immunol. Methods. – 2005. – V. 299, No 1–2. – P. 139–151. – doi: 10.1016/j.jim.2005.02.006.

Поступила в редакцию

27.05.2022

Степанова Ирина Ильдаровна, научный сотрудник лаборатории патологии репродукции